《保健食品原料目录螺旋藻》
螺旋藻原料技术要求
螺旋藻为钝顶螺旋藻(Arthrospiraplatensis)和极大螺旋藻(Arthrospiramaxima)经人工培养、采收、清洗的藻泥,经过喷雾干燥,或者其他干燥方法并经杀菌获得的干粉。
应符合表1规定。
表1感官指标
取少量样品于水中,充分震荡搅拌使藻粉颗粒分散,显微镜视野中应呈分散、绿色的S形、L形、C形或螺旋形的藻丝体,不得有明显异物。
应符合表2规定。
表2理化指标
应符合表3规定。
表3微生物指标
注:n为同一批次产品应采集的样品件数;c为最大可允许超出m值的样品数;m为致病菌指标可接受水平的限量值;M为致病菌指标的最高安全限量值。
应符合表4规定。
表4标志性成分指标
1β-胡萝卜素的测定
1.1试剂和材料
1.1.1氢氧化钾溶液:称固体氢氧化钾g,加入mL水溶解。临用前配制。
1.1.2无水硫酸钠(Na2SO4),分析纯
1.1.3抗坏血酸(C6H8O6),分析纯
1.1.4石油醚:沸程30℃~60℃,分析纯
1.1.5甲醇(CH4O),色谱纯
1.1.6乙腈(C2H3N),色谱纯
1.1.7甲基叔丁基醚[CH3OC(CH3)3],色谱纯
1.1.8二氯甲烷(CH2Cl2),色谱纯
1.1.9无水乙醇(C2H6O),优级纯
1.1.10水,符合GB/T规定的一级水
1.1.11碘溶液(I2):0.5mol/L浓度
1.1.,6-二叔丁基-4-甲基苯酚(C15H24O,BHT)
1.2仪器和设备
1.2.1匀浆机
1.2.2高速粉碎机
1.2.3恒温振荡水浴箱(控温精度±1℃)
1.2.4旋转蒸发器
1.2.5氮吹仪
1.2.6紫外-可见光分光光度计
1.2.7高效液相色谱仪(带紫外检测器)
1.3对照品溶液制备
1.3.1β-胡萝卜素标准储备液(μg/mL)
准确称取β-胡萝卜素标准品25mg(精确到0.1mg),加入0.gBHT,用二氯甲烷溶解,转移至50mL棕色容量瓶中定容至刻度。
1.3.2β-胡萝卜素标准中间液(μg/mL)
从β-胡萝卜素标准储备液中准确移取10.0mL溶液于50mL棕色容量瓶中,用二氯甲烷定容至刻度。
1.3.3β-胡萝卜素标准工作液
从β-胡萝卜素标准中间液中分别准确移取0.50mL、1.00mL、2.00mL、3.00mL、4.00mL、10.00mL溶液至6个mL棕色容量瓶。用二氯甲烷定容至刻度,得到浓度为0.5μg/mL、1.0μg/mL、2.0μg/mL、3.0μg/mL、4.0μg/mL、10μg/mL的系列标准工作液。
1.3.4碘乙醇溶液(0.05mol/L)
吸取5mL碘溶液,用乙醇稀释至50mL,混匀。
1.3.5异构化β-胡萝卜素溶液
取10mLβ-胡萝卜素标准储备液于烧杯中,加入20μL碘乙醇溶液,摇匀后于日光下或距离40W日光灯30cm处照射15min,用二氯甲烷稀释至50mL。摇匀后过0.45μm滤膜,备HPLC色谱分析用。
1.4供试品溶液制备
1.4.1预处理
精确称取1g~5g(精确至0.g)螺旋藻粉,转至mL锥形瓶中,加入1g抗坏血酸、75mL无水乙醇,于60℃±1℃水浴振荡30min。
1.4.2皂化
加入25mL氢氧化钾溶液,盖上瓶塞。置于已预热至53℃±2℃恒温振荡水浴箱中,皂化30min。取出,静置,冷却到室温。
1.4.3试样萃取
将皂化液转入mL分液漏斗中,加入mL石油醚,轻轻摇动,排气,盖好瓶塞,室温下振荡,10min后静置分层,将水相转入另一分液漏斗中按上述方法进行第二次提取。合并有机相,用水洗至近中性。弃水相,有机相通过无水硫酸钠过滤脱水。滤液收入mL蒸发瓶中,于旋转蒸发器上40℃±2℃减压浓缩,近干。用氮气吹干,用移液管准确加入5.0mL二氯甲烷,盖上瓶塞,充分溶解提取物。经0.45μm膜过滤后,弃出初始约1mL滤液后收集至进样瓶中,备用。
1.5色谱条件
a)色谱柱:C30柱,柱长mm,内径4.6mm,粒径5μm,或等效柱;
b)流动相:A相:甲醇:乙腈:水=73.5:24.5:2;
B相:甲基叔丁基醚;
表5梯度程序
c)流速:1.0mL/min;
d)检测波长:nm;
e)柱温:30℃±1℃;
f)进样体积:20μL。
1.6测定
在相同色谱条件下,将待测液注入液相色谱仪中,以保留时间定性,根据峰面积采用外标法定量,β-胡萝卜素根据全反式β-胡萝卜素响应因子进行计算。
1.7全反式β-胡萝卜素色谱纯度的计算
1.7.1β-胡萝卜素异构体保留时间的确认
分别取β-胡萝卜素标准中间液(μg/mL)和异构化β-胡萝卜素溶液,按照色谱条件注入HPLC仪进行色谱分析。根据β-胡萝卜素标准中间液的色谱图确认全反式β-胡萝卜素的保留时间;对比β-胡萝卜素标准中间液和异构化β-胡萝卜素溶液色谱图中各峰面积变化,以及与全反式β-胡萝卜素的位置关系确认顺式β-胡萝卜素异构体的保留时间:全反式β-胡萝卜素前较大的色谱峰为13-顺式-β-胡萝卜素,紧邻全反式β-胡萝卜素后较大的色谱峰为9-顺式-β-胡萝卜素,13-顺式-β-胡萝卜素前是15-顺式-β-胡萝卜素,另外可能还有其他较小的顺式结构色谱峰,色谱图见图。
1.7.2全反式β反胡萝卜素标准液色谱纯度的计算
取β-胡萝卜素标准工作液(3μg/mL),按照色谱条件进行HPLC分析,重复进样6次。计算全反式β-胡萝卜素色谱峰的峰面积、全反式与上述各顺式结构的峰面积总和,全反式β-胡萝卜素色谱纯度(CP)按公式计算。
CP———全反式β-胡萝卜素色谱纯度,%;
all-E———全反式β-胡萝卜素色谱峰峰面积平均值,单位为峰面积(AU);
sum———全反式β-胡萝卜素及各顺式结构峰面积总和平均值,单位为峰面积(AU)。
1.8结果计算
计算全反式β-胡萝卜素响应因子
将β-胡萝卜素混合标准工作液注入HPLC仪中(色谱图见图1),根据保留时间定性,测定β-胡萝卜素各异构体峰面积。
β-胡萝卜素根据标准工作液标定浓度、全反式β-胡萝卜素6次测定峰面积平均值、全反式β-胡萝卜素色谱纯度(CP),按公式计算全反式β-胡萝卜素响应因子。
式中:
RF———全反式β-胡萝卜素响应因子,单位为峰面积毫升每微克(AU·mL/μg);
all-E———全反式β-胡萝卜素标准工作液色谱峰峰面积平均值,单位为峰面积(AU);
ρ———β-胡萝卜素标准工作液标定浓度,单位为微克每毫升(μg/mL);
CP———全反式β-胡萝卜素的色谱纯度,%。
试样中β-胡萝卜素含量按下公式计算:
式中:
Xβ———试样中β-胡萝卜素的含量,单位为微克每百克(μg/g);
Aall-E———试样待测液中全反式β-胡萝卜素峰面积,单位为峰面积(AU);
A9Z———试样待测液中9-顺式-β-胡萝卜素的峰面积,单位为峰面积(AU);
A13Z———试样待测液中13-顺式-β-胡萝卜素的峰面积,单位为峰面积(AU);
1.2———13-顺式-β-胡萝卜素的相对校正因子;
A15Z———试样待测液中15-顺式-β-胡萝卜素的峰面积,单位为峰面积(AU);
1.4———15-顺式-β-胡萝卜素的相对校正因子;
AxZ———试样待测液中其他顺式β-胡萝卜素的峰面积,单位为峰面积(AU);
V———试样液定容体积,单位为毫升(mL);
———将结果表示为微克每百克(μg/g)的系数;
RF———全反式β-胡萝卜素响应因子,单位为峰面积毫升每微克(AU·mL/μg);
m———试样质量,单位为克(g)。
注1:由于β-胡萝卜素各异构体百分吸光系数不同(见附录D),所以在β-胡萝卜素计算过程中,需采用相对校正因子对结果进行校正。
注2:如果试样中其他顺式β-胡萝卜素含量较低,可不进行计算。
1.9色谱图
图1β-胡萝卜素检测色谱图
说明:
Ⅰ——15-顺式-β-胡萝卜素;
Ⅱ——13-顺式-β-胡萝卜素;
Ⅲ——全反式α-胡萝卜素;
Ⅳ——全反式β-胡萝卜素;
Ⅴ——9-顺式-β-胡萝卜素。
2藻蓝蛋白的测定
2.1试剂
磷酸盐缓冲溶液:将0.1mol/L磷酸二氢钾溶液与0.1mol/L磷酸氢二钾溶液(45+55V/V)混合,溶液pH值为7.0。
2.2仪器和设备
2.2.1分光光度计
2.2.2超声波振荡器
2.2.3离心机(r/min)
2.2.4低温冰箱(-20℃)
2.2.5离心管(50mL)。
2.3供试品溶液制备
称取试样0.25-0.5g(精确至0.0g)。用缓冲液(2.1项)溶解,超声振荡5min.定容于mL容量瓶中,摇匀。将溶液全部转入mL广口塑料瓶,置于-20℃冰箱内冷冻12h(或放置过夜)。取出解冻,摇匀。
2.4测定
取部分溶液于离心管中,在r/min转速下离心15min取上层清液.1cm比色皿,在分光光度计上分别测定nm、nm、nm处的吸光度,用缓冲液(2.1项)做空白。
2.5结果计算
X1——测试液中藻蓝素的含量,单位为毫克每毫升(mg/mL);
X2——测试液中异藻蓝素的含量,单位为毫克每毫升(mg/mL);
X3——测试液中藻红素的含量,单位为毫克每毫升(mg/mL);
A——相应波长处(nm,nm,nm)测得吸光值;
X4——试样中藻蓝蛋白的质量分数,单位为克每克(g/g);
V——样品定容体积,单位为毫升(mL)。
m——试样质量,单位为克(g)。
测定结果取平行试验结果的算术平均值,保留小数点后第二位。
平行试验允许误差(相对)不大于4%。
注2整个操作过程须注意避光,分光光度测定应在15min内完成。
包装应密封、牢固、防潮、不易破损,贮藏在遮荫、干燥、通风的库房内
片剂、颗粒剂、硬胶囊
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(信息来源:国家市场监督管理总局;编发:北京天健华成国际投资顾问有限公司保健食品注册部)
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